【醫學百科●補體結合試驗】
拼音
bǔtǐjiéhéshìyàn
英文參考
complementfixationtest;CFT
概述
補體結合試驗（complementfixationtest，CFT）是用免疫溶血機制做指示系統，來檢測另一反應系統抗原或抗體的試驗。
早在1906年Wasermann就將其應用于梅毒的診斷，即著名的華氏反應。
這一傳統的試驗經不斷改進，除了用于傳染病診斷和流行病學調查以外，在一些自身抗體、腫瘤相關以原以及HLA的檢測和分析中也有應用。
補體結合試驗利用抗原抗體復合物同補體結合，把含有已知濃度的補體反應液中的補體消耗掉使濃度減低的現象，以檢出抗原或抗體，是高敏度檢出方法之一，特別是根據抗原物質的特性，抗原抗體反應不能用沉淀反應或凝集反應觀察時也可以利用此法。
試驗由兩個階段組成：首先將經過56℃處理30分鐘使補體滅活的抗血清，與抗原及補體（通常將豚鼠血清作適當稀釋后使用）混合使起反應。
第二是加入已同抗綿羊紅細胞抗體相結合的綿羊紅細胞（致敏紅細胞）。
在最初階段對消耗補體建立起足夠的抗原抗體反應時，沒有發生致敏紅細胞的溶血，但補體剩余下來則引起溶血反應。
用于檢查梅毒的梅毒補體結合反應（瓦氏反應，Wassermannreaction）是最常進行的補體結合試驗。
補體的測定包括測定補體總量、溶血活性、單個補體成份和補體片段量以及補體參與試驗等。
類型及原理
補體結合試驗中有5種成分參與反應，分屬于3個系統：①反應系統，即已知的抗原（或抗體）與待測的抗體（或抗原）；
②補體系統；
③指示系統，即SRBC與相應溶血素，試驗時常將其預先結合在一起，形成致敏紅細胞。
反應系統與指示系統爭奪補體系統，先加入反應系統給其以優先結合補體的機會。
如果反應系統中存在待測的抗體（或抗原），則抗原抗體發生反應后可結合補體；
再加入指示系統時，由于反應液中已沒有游離的補體而不出現溶血，是為補體結合試驗陽性。
如果反應系統中不存在的待檢的抗體（或抗原），則在液體中仍有游離的補體存在，當加入指示系統時會出現溶血，是為補體結合試驗陰性（圖14-2）。
因此補體結合試驗可用已知抗原來檢測相應抗體，或用已知抗體來檢測相應抗原。
圖14-2補體結合試驗示意圖
試驗方法
補體結合試驗的改良方法較多，較常用的有全量法（3ml）、半量法（1.5ml）、小量法（0.6ml）和微量法（塑板法）等。
目前以后兩種方法應用較為廣泛，因為可以節省抗原，血清標本用量較少，特異性也較好。
以下敘述以小量法為例，即抗原、抗體、溶血素、羊紅細胞各加0.1ml，補體加0.2ml，總量為0.6ml。
試劑1．抗原試驗中用于檢測抗體的抗原應適當提純，純度愈高，特異性愈強。
如使用粗制抗原時，須經同樣處理的正常組織作抗原對照，以識別待檢血清中可能存在的、對正常組織成分的非特異性反應。
2．抗原和抗本的滴定補體結合試驗中，抗原與抗體按一定比例結合，因而應通過試驗選擇適宜的濃度比例。
多采用方陣法進行滴定，選擇抗原與抗體兩者都呈強陽性反應（100％不溶血）的最高稀釋度作為抗原和抗體的效價（單價）。
滴定方法舉例如表14-4。
在試管中加入不同稀釋度的抗原，配加不同稀釋度的抗血清，另作不加抗原的抗體對照管和不加抗血清的抗原對照管。
按照試驗方法加補體和指示系統，溫育后觀察結果。
在表14-4中可見1:64抗原和1:32抗體各作為1個單位。
在正式試驗中，抗原一般采用2～4個單位（1:64～1:32），抗體采用4個單位（1:8）。
表14-4抗原和抗體的方陣滴定抗原抗血清稀釋倍數抗原對照1:41:81:161:321:641:1281:2561:5121:44444443201:84444432101:164444322±01:32444431±001:64444④2±0001:1284210000001:2563100000001:512000000000抗體對照00000000注：1、2、3、4分別表示溶血反應強度＋、＋＋、＋＋＋、＋＋＋＋；
0為不溶血。
3．補體滴定按表14-5逐步加入各試劑，溫育后觀察最少量補體能產生完全溶血者，確定為1個實用單位，正式試驗中使用2個實用單位。
如形14-5中的結果為1:60的補體0.12ml可產生完全溶血，按比例公式0.12×2:60＝0.2:X計算，X＝50；
即實際應用中的2個補體實用單位應為1:50稀釋的補體0.2ml。
表14-5補體的滴定管號1:60補體（ml）緩沖液（ml）稀釋抗原（ml）致敏SRBC（ml）結果10.040.260.1放置37℃水浴30min0.2放置37℃水浴30min不溶血20.060.240.10.2不溶血30.080.220.10.2微溶血40.100.200.10.2微溶血50.120.180.10.2全溶血60.140.160.10.2全溶血血清標本采集血液標本后及時分離血清，及時檢驗或將血清保存于－20℃。
血清在試驗前應先加熱56℃30min（或60℃3min）以破壞補體和除去一些非特異因素。
血清標本遇有抗補本現象時可做下列處理之一：①加熱提高12；
②－20℃凍融后離心去沉淀；
③以3mmol/L鹽酸處理；
④加入少量補體后再加熱滅活；
⑤以白陶土處理；
⑥通入CO2；
⑦以小白鼠肝粉處理；
⑧用含10％新鮮雞蛋清的生理鹽水稀釋補體。
正式試驗以小量法測定抗體的補體結合試驗為例。
按表14-6逐步加入各種試劑，溫育后先觀察各類對照管，應與預期的結果吻合。
陰性、陽性對照管中應分別為明確的溶血與不溶血；
抗體或抗原對照管、待檢血清對照管、陽性和陰性對照的對照管都應完全溶血。
綿羊紅細胞對照管不應出現自發性溶血。
補體對照管應呈現2U為全溶，1U為全溶略帶有少許紅細胞，0.5U應不溶。
如0.5U補體對照出現全溶表明補體用量過多；
如2U對照管不出現溶血，說明補體用量不夠，對結果都有影響，應重復進行試驗。
補體結合試驗結果，受檢血清不溶血為陽性，溶血為陰性。
表14-6測定抗體的補體結合試驗操作程序反應物（ml）待檢血清管陽性對照管陰性對照管抗原對照管補體對照管紅細胞對照管測定對照測定對照測定對照2U1U0.5U稀釋血清0.10.10.10.10.10.1－－－－－抗原0.1－0.1－0.1－0.10.10.10.1－緩沖液－0.1－0.1－0.10.10.10.10.10.42U補體0.20.20.20.20.20.20.20.2－－－1U補體－－－－－－－－0.2－－0.5U補體－－－－－－－－－0.2－混勻，置37℃1h或4℃16～18h致敏紅細胞0.20.20.20.20.20.20.20.20.20.20.2混勻，置37℃30min后觀察結果
應用和評價
補體結合試驗是一種傳統的免疫學技術，能夠沿用至今說明它本身有一定的優點：①靈敏度高。
補體活化過程有放大作用，比沉淀反應和凝集反應的靈敏度高得多，能測定0.05μg/ml的抗體，可與間接凝集法的靈敏度相當。
②特異性強。
各種反應成分事先都經過滴定，選擇了最佳比例，出現交叉反應的機率較小，尤其用小量法或微量法時。
③應用面廣，可用于檢測多種類型的抗原或抗體。
④易于普及，試驗結果顯而易見；
試驗條件要求低，不需要特殊儀器或只用光電比色計即可。
補體結合試驗可應用在以下幾方面：①傳染病診斷。
病原性抗原及相應抗體的檢測。
②其他抗原的檢測。
例如腫瘤相關抗原、血跡中的蛋白質鑒定、HLA分型等。
③自身抗體檢測。
但是補體結合試驗參與反應的成分多，影響因素復雜，操作步驟繁鎖并且要求十分嚴格，稍有疏忽便會得出不正確的結果，所以在多種測定中已被其他更易被接受的方法所取代。
但對于免疫學技術的基本訓練仍是一個很好的試驗。
正常值
陰性：0～1∶10
化驗結果意義
>1∶10為陽性，診斷布氏桿菌病符合率為97.96%。
單份血清效價≥１:１６或雙份血清效價≥４倍時即可診斷為立克次體感染。
化驗取材
血液
化驗方法
立克次體傳染病免疫學檢測
化驗類別
傳染病免疫學檢查>立克次體傳染病免疫學檢測
參考資料
《新編臨床檢驗與檢查手冊》、《新編化驗員工作手冊》
引用：http://big5.wiki8.com/butijieheshiyan_41391/
| 歡迎光臨 【五術堪輿學苑】 (http://aa.wsky.ink/) | Powered by Discuz! X3.1 |