【醫學百科●ELISA】

楊籍富 發表於 2013-1-5 20:57:11

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1971年Engvall和Perlmann發表了酶聯免疫吸附劑測定（enzymelinkedimmunosorbentassay，ELISA）用于IgG定量測定的文章，使得1966年開始用于抗原定位的酶標抗體技術發展成液體標本中微量物質的測定方法。
 
ELISA基本原理這一方法的基本原理是：①使抗原或抗體結合到某種固相載體表面，并保持其免疫活性。
 
②使抗原或抗體與某種酶連接成酶標抗原或抗體，這種酶標抗原或抗體既保留其免疫活性，又保留酶的活性。
 
在測定時，把受檢標本（測定其中的抗體或抗原）和酶標抗原或抗體按不同的步驟與固相載體表面的抗原或抗體起反應。
 
用洗滌的方法使固相載體上形成的抗原抗體復合物與其他物質分開，最后結合在固相載體上的酶量與標本中受檢物質的量成一定的比例。
 
加入酶反應的底物后，底物被酶催化變為有色產物，產物的量與標本中受檢物質的量直接相關，故可根據顏色反應的深淺刊物定性或定量分析。
 
由于酶的催化頻率很高，故可極大地地放大反應效果，從而使測定方法
 
達到很高的敏感度。
 
方法類型和操作步驟ELISA可用于測定抗原，也可用于測定抗體。
 
在這種測定方法中有3種必要的試劑：①固相的抗原或抗體，②酶標記的抗原或抗體，③酶作用的底物。
 
根據試劑的來源和標本的性狀以及檢測的具備條件，可設計出各種不同類型的檢測方法。
 
（一）雙抗體夾心法雙抗體夾心法（圖15-4）是檢測抗原最常用的方法，操作步驟如下：圖15-4雙抗體夾心法測抗原示意圖（1）將特異性抗體與固相載體連接，形成固相抗體：洗滌除去未結合的抗體及雜質。
 
（2）加受檢標本：使之與固相抗體接觸反應一段時間，讓標本中的抗原與固相載體上的抗體結合，形成固相抗原復合物。
 
洗滌除去其他未結合的物質。
 
（3）加酶標抗體：使固相免疫復合物上的抗原與酶標抗體結合。
 
徹底洗滌未結合的酶標抗體。
 
此時固相載體上帶有的酶量與標本中受檢物質的量正相關。
 
（4）加底物：夾心式復合物中的酶催化底物成為有色產物。
 
根據顏色反應的程度進行該抗原的定性或定量。
 
根據同樣原理，將大分子抗原分別制備固相抗原和酶標抗原結合物，即可用雙抗原夾心法測定標本中的抗體。
 
（二）雙位點一步法在雙抗體夾心法測定抗原時，如應用針對抗原分子上兩個不同抗原決定簇的單克隆抗體分別作為固相抗體和酶標抗體，則在測定時可使標本的加入和酶標抗體的加入兩步并作一步（圖15-5）。
 
這種雙位點一步不但簡化了操作，縮短了反應時間，如應用高親和力的單克隆抗體，測定的敏感性和特異性也顯著提高。
 
單克隆抗體的應用使測定抗原的ELISA提高到新水平。
 
圖15-5雙位點一步法示意圖在一步法測定中，應注意鉤狀效應（hookeffect），類同于沉淀反應中抗原過剩的后帶現象。
 
當標本中待測抗原濃度相當高時，過量抗原分別和固相抗體及酶標抗體結合，而不再形成夾心復合物，所得結果將低于實際含量。
 
鉤狀效應嚴重時甚至可出現假陰性結果。
 
（三）間接法測抗體間接法（圖15-6）是檢測抗體最常用的方法，其原理為利用酶標記的抗抗體以檢測已與固相結合的受檢抗體，故稱為間接法。
 
操作步驟如下：（1）將特異性抗原與固相載體連接，形成固相抗原：洗滌除去未結合的抗原及雜質。
 
（2）加稀釋的受檢血清：其中的特異抗體與抗原結合，形成固相抗原抗體復合物。
 
經洗滌后，固相載體上只留下特異性抗體。
 
其他免疫球蛋白及血清中的雜質由于不能與固相抗原結合，在洗滌過程中被洗去。
 
（3）加酶標抗抗體：與固相復合物中的抗體結合，從而使該抗體間接地標記上酶。
 
洗滌后，固相載體上的酶量就代表特異性抗體的量。
 
例如欲測人對某種疾病的抗體，可用酶標羊抗人IgG抗體。
 
（4）加底物顯色：顏色深度代表標本中受檢抗體的量。
 
本法只要更換不同的固相抗原，可以用一種酶標抗抗體檢測各種與抗原相應的抗體。
 
圖15-6間接法測抗體示意圖（四）競爭法競爭法（圖15-7）可用于測定抗原，也可用于測定抗體。
 
以測定抗原為例，受檢抗原和酶標抗原競爭與固相抗體結合，因此結合于固相的酶標抗原量與受檢抗原的量呈反比。
 
操作步驟如下：（1）將特異抗體與固相載體連接，形成固相抗體。
 
洗滌。
 
（2）待測管中加受檢標本和一定量酶標抗原的混合溶液，使之與固相抗體反應。
 
如受檢標本中無抗原，則酶標抗原能順利地與固相抗體結合。
 
如受檢標本中含有抗原，則與酶標抗原以同樣的機會與固相抗體結合，競爭性地占去了酶標抗原與固相載體結合的機會，使酶標抗原與固相載體的結合量減少。
 
參考管中只加酶標抗原，保溫后，酶標抗原與固相抗體的結合可達最充分的量。
 
洗滌。
 
（3）加底物顯色：參考管中由于結合的酶標抗原最多，故顏色最深。
 
參考管顏色深度與待測管顏色深度之差，代表受檢標本抗原的量。
 
待測管顏色越淡，表示標本中抗原含量越多。
 
圖15-7競爭法測抗原示意圖（五）捕獲法測IgM抗體血清中針對某些抗原的特異性IgM常和特異性IgG同時存在，后者會干擾IgM抗體的測定。
 
因此測定IgM抗本多用捕獲法（圖15-8），先將所有血清IgM（包括異性IgM和非特異性IgM）固定在固相上，在去除IgG后再測定特異性IgM。
 
操作步驟如下：圖15-8捕獲法測IgM抗體示意圖（1）將抗人IgM抗體連接在固相載體上，形成固相抗人IgM。
 
洗滌。
 
（2）加入稀釋的血清標本：保溫反應后血清中的IgM抗體被固相抗體捕獲。
 
洗滌除去其他免疫球蛋白和血清中的雜質成分。
 
（3）加入特異性抗原試劑：它只與固相上的特異性IgM結合。
 
洗滌。
 
（4）加入針對特異性的酶標抗體：使之與結合在固相上的抗原反應結合。
 
洗滌。
 
（5）加底物顯色：如有顏色顯示，則表示血清標本中的特異性IgM抗體存在，是為陽性反應。
 
（六）應用親和素和生物素的ELISA親和素是一種糖蛋白，可由蛋清中提取。
 
分子量60kD，每個分子由4個亞基組成，可以和4個生物素分子親密結合。
 
現在使用更多的是從鏈霉菌中提取的鏈霉和素（strepavidin）。
 
生物素（biotin）又稱維生素H，分子量244.31，存在于蛋黃中。
 
用化學方法
 
制成的衍生物，生物素－羥基琥珀亞胺酯（biotin-hydroxysuccinimide，BNHS）可與蛋白質、糖類和酶等多種類型的大小分子形成生物素化的產物。
 
親和素與生物素的結合，雖不屬免疫反應，但特異性強，親和力大，兩者一經結合就極為穩定。
 
由于1個親和素分子有4個生物素分子的結合位置，可以連接更多的生物素化的分子，形成一種類似晶格的復合體。
 
因此把親和素和生物素與ELIS偶聯起來，就可大提高ELISA的敏感度。
 
親和素－生物素系統在ELISA中的應用有多種形式，可用于間接包被，亦可用于終反應放大。
 
可以在固相上先預包被親和素，原用吸附法包被固相的抗體或抗原與生物素結合，通過親和素－生物素反應而使生物素化的抗體或抗在相化。
 
這種包被法不僅可增加吸附的抗體或抗原量，而且使其結合點充分暴露。
 
另外，在常規ELISA中的酶標抗體也可用生物素化的抗體替代，然后連接親和素－酶結合物，以放大反應信號。
 
橋聯法ABC-ELISA（avidinbiotincomplex-ELISA）夾心法測抗原的過程見圖15-9。
 
圖15-9橋連法ABC-ELISA夾心法測抗原示意圖ELISA的技術要點ELISA的技術要點包括三個方面：試劑的制備、反應條件的選擇和操作的標準化。
 
試劑的制備ELISA的主要試劑為固相的抗原或抗體、酶標記的抗原或抗體和與標記酶直接關聯的酶反應底物。
 
以下敘述這些試劑的原料和制備方法。
 
（一）固相載體可作ELISA中載體的物質很多，最常用的是聚苯乙烯。
 
聚苯乙烯具有較強的吸附蛋白質的性能，抗體或蛋白質抗原吸附其上后保留原來的免疫活性。
 
聚苯乙烯為塑料，可制成各種形式。
 
在ELISA測定過程中，它作為載體和容器，不參與化學反應。
 
加之它的價格低廉，所以被普遍采用。
 
ELISA載體的形狀主要有三種：小試管、小珠和微量反應板。
 
小試管的特點是還能兼作反應的容器，最后放入分光光度計中比色。
 
小珠一般為直徑0.6cm的圓球，表面經磨砂處理后吸附面積大增加。
 
如用特殊的洗滌器，在洗滌過程中使圓珠滾動淋洗，效果更好。
 
最常用的載體為微量反應板，專用于ELISA測定的產品也稱為ELISA板，國際通用的標準板形是8×12的96孔式。
 
為便于作少量標本的檢測，有制成8聯或12聯孔條的，放入座架后，大小與標準ELISA板相同。
 
ELISA板的特點是可以同時進行大量標本的檢測，并可在特定的比色計上迅速讀出結果。
 
現在已有多種自動化儀器用于微量反應板型的ELISA檢測，包括加樣、洗滌、保溫、比色等步驟，對操作的標準化極為有利。
 
良好的ELISA板應該是吸附性能好，空白值低，孔底透明度高，各板之間和同一板各孔之間性能相近。
 
聚苯乙烯ELISA板由于配料的不同和制作工藝的差別，各種產品的質量差異很大。
 
因此每一批號的聚苯乙烯制品在使用前須檢查其性能。
 
常用的檢查方法
 
為：以一定濃度的人IgG（一般為10ng/ml）包被ELISA板各孔后，每孔內加入適當稀釋的酶標抗人IgG抗人IgG抗體，保溫后洗滌，加底物顯色，終止酶反應后分別測每孔溶液的吸光度。
 
控制反應條件，使各讀數在0.8左右。
 
計算所有讀數的平均值。
 
所有單個讀數與平均讀數之差應小于10％。
 
與聚苯乙烯類似的塑料為聚氯乙烯。
 
作為ELISA固相載體，聚氯乙烯板的特點為質軟板薄，可切割，價廉、但光潔度不如聚苯乙烯板。
 
聚氯乙烯對蛋白質的吸附性能比聚苯乙烯高，但空白值有時也略高。
 
為比較不同固相在某一ELISA測定中的優劣，可用以下方法
 
加以檢驗：用其它免疫學測定方法
 
選出一個典型的陽性標本和一個典型的陰性標本。
 
將它們分別進行一系列稀釋后，在不同的固相載體上按預定的ELISA操作步驟進行測定，然后比較測定結果。
 
在哪一種載體上陽性結果與陰性結果判別最大，這種載體就是這一ELISA測定的最合適的固相載體。
 
除塑料制品外，固相酶免疫測定的載體還有兩種材料：一是微孔濾膜，如硝酸纖維素膜、尼龍膜等，這類測定形式將在本章第五節“膜載體的酶免疫測定”中介紹。
 
另一種載體是以含鐵的磁性微粒制作的，反應時固相微粒懸浮在溶液中，具有液相反應的速率，反應結束后用磁鐵吸引作為分離的手段，洗滌也十分方便，但需配備特殊的儀器。
 
（二）抗原和抗體在ELISA實施過程中，抗原和抗體的質量是實驗是否成功的關鍵因素。
 
本法要求所用抗原純度高，抗體效價高、親和力強。
 
ELISA所用抗原有三個來源：天然抗原、重組抗原和合成多肽抗原。
 
天然抗原取材于動物組織或體液、微生物培養物等，一般含有多種抗原成分，需經純化，提取出特定的抗原成分后才可應用，因此也稱提純抗原（purifiedantigen）。
 
重組抗原（recombinantantigen）和多肽抗原（peptideantigen）均為人工合成品，使用安全，而且純度高，干擾物質少。
 
因此雖然制備合成抗原有較高的技術難度且要求較為昂貴的儀器設備和試劑，其應用仍十分普遍，特別是對那些天然抗原不易得到的試驗，更顯出其獨到之處。
 
用于ELISA的抗體有多克隆的和單克隆的。
 
抗血清成分復雜，應從中提取IgG才可用于包被固相或酶標記。
 
含單克隆抗體的小鼠腹水中的特異性抗體含量較高，有時可適當稀釋后直接進行包被。
 
制備酶結合物用的抗體的質量往往要求有較高的純度。
 
經硫酸銨鹽析純化的IgG可進一步用各種分子篩層析提純。
 
也可用親和層析法提純特異性IgG，如用酶消化IgG后提取的Fab片段，則效果更好。
 
（三）免疫吸附劑固相的抗原或抗體稱為免疫吸附劑。
 
將抗原或抗體固相化的過程稱為包被（coating）。
 
由于載體的不同，包被的方法
 
也不同。
 
如以聚苯乙烯ELISA板為載體，通常將抗原或抗體溶于緩沖液（最常用的為pH9.6的碳酸緩沖液）中，加于ELISA板孔中在4℃過夜，經清洗后即可應用。
 
如果包被液中的蛋白質濃度過低，固相載體表面有能被此蛋白質完全覆蓋，其后加入的血清標本和酶結合物中的蛋白質也會部分地吸附于固相載體表面，最后產生非特異性顯色而導致本底偏高。
 
在這種情況下，如在包被后再用1％～5％牛血清白蛋白包被一次，可以消除這種干擾。
 
這一過程稱為封閉（blocking）。
 
包被好的ELISA板在低溫可放置一段時間而不失去其免疫活性。
 
（四）酶和底物ELISA中所用的酶要求純度高、催化反應的轉化率高、專一性強、性質穩定、來源豐富、價格不貴、制備成的酶標抗體或抗原性質穩定，繼續保留著它的活性部分和催化能力。
 
最好在受檢標本中不存在與標記酶相同的酶。
 
另外它的相應底物應易于制備和保存，價格低廉，有色產物易于測定，光吸收高。
 
ELISA中最常用的酶為辣根過氧化酶（HRP）和從牛腸粘膜或大腸桿菌提取的堿性磷酸酶（AP）。
 
HRP在蔬菜作物辣根中含量很高，純化方法
 
也不復雜。
 
它是一種糖蛋白，含糖量約18％；
 
分子量為44kD；
 
是一種復合酶，由主酶（酶蛋白）和輔基（亞鐵血紅素）結合而成的一種卟啉蛋白質。
 
主酶為無色糖蛋白，在275nm波長處有最高吸收峰；
 
輔基是深棕色的含鐵卟啉環，在403nm波長處有最高吸收峰。
 
HRP催化下列反應：上式中DH2為供氫體，H2O2O為受氫體。
 
HRP對受氫體的專一性很高，除H2O2外，僅作用于小分子醇的過氧化物和尿素的過氧化物。
 
后者為固體，作為試劑較H2O2方便。
 
許多化合物可作為HRP的供氧體，在ELISA中常用的供氫體底物為鄰苯二胺（orthopenylenediamine，OPD）、四甲基聯苯胺（3，3＇，5，5＇-tetramethylbenzidine，TMB）和ABTS。
 
OPD為在ELISA中應用最多的底物，靈敏度高，比色方便。
 
其缺點是配成應用液后穩定性差，而且具有致異變性。
 
TMB無此缺點。
 
TMB經酶作用后由無色變藍色，目測對比鮮明；
 
加酸停止酶反應后變黃色，可在比色計中定量；
 
因此應用日見增多。
 
ABTS，雖然靈敏度不如OPD和TMB，但空白值很低。
 
HRP催化OPD的反應如下：HRP的純度用RZ（ReinheitZahl，意為純度數）表示，是403nm的吸光度與280nm的吸光度之比，高純度的HRP的RZ≥3.0。
 
應注意的是酶變性后，RZ可不變而活力降低，故重用酶制劑時更重要的指標為活力。
 
酶活力以單位表示：1min將1μmol的底物轉化為產物的酶量為1個單位。
 
在ELISA中另一常用的酶為堿性磷酸酶。
 
從大腸桿菌提取的AP分子量為80kD，酶作用的最適pH為8.0；
 
用小牛腸粘膜提取的AP分子量為100kD，最適pH為9.6。
 
一般采用對硝基苯磷酸酯（p-nitrophenylphosphate，p-NPP）作為底物。
 
它可制成片狀試劑，使用方便。
 
產物為黃色的對硝基酚，在405nm有吸收峰。
 
用NaOH終止酶反應后，黃色可穩定一段時間。
 
反應式如下：在ELISA中應用AP系統，其敏感性一般高于應用HRP系統，空白值也較低。
 
但由于AP較難得到高純度制劑，穩定性較HRP低，價格較HRP高，制備酶結合物時得率較HRP低等原因，國內在ELISA中一般均采用HRP。
 
除HRP和AP以外，在商品ELISA試劑中應用的酶尚有葡萄糖氧化酶、β-半乳糖苷酶和脲酶等。
 
β-半乳糖苷酸的底物常用4-甲基傘基-β-D半乳糖苷（4-mehtyumbelliferyl-β-D-galactoside），經酶水解后產生熒光物質4-甲基傘酮（4-mehtylumbelliferone），可用熒光計檢測。
 
熒光的放大作用大大提高了方法
 
的敏感度。
 
AP也可應用可產生熒光的傘基磷酸酯作底物。
 
其缺點是需要熒光計測定，而且如用固相載體直接作為測定容器，此載體不可發出熒光。
 
脲酶的特點是酶作用后反應液發生pH改變，可使指示劑變色；
 
另外，在人體內沒有內源酶（酶的化學發光底物見第十八章）。
 
（五）結合物酶標記的抗原或抗體稱為結合物（conjugate）。
 
抗原由于化學結構不同，可用不同的方法
 
與酶結合。
 
如為蛋白質抗原，基本上可參考抗體酶標記的方法。
 
制備抗體酶結合物的方法
 
通常有以下幾種。
 
1．戊二醛交聯法戊二醛是一種雙功能團試劑，可以使酶與蛋白質或其他抗原的氨基通過它而偶聯。
 
戊二醛交聯可用一步法（如連接AP），也可用二步法（如連接HRP）。
 
舉例如下：2～5mg純抗體與5mgAP混合于0.1mol/LpH6.8的磷酸緩沖液1ml中，4℃下對同上緩沖液透析平衡。
 
磁力攪拌下，緩慢加入1％戊二醛0.05ml，在室溫下放置2小時。
 
在4℃下對0.05mol/LpH8.0Tris緩沖液透析平衡，即得酶標抗體。
 
辣根過氧化物酶可溶解于50％飽和度硫酸銨中。
 
用上法交聯后可用50％飽和度硫酸銨沉淀酶標抗體，棄去上清中游離酶。
 
戊二醛一步法操作簡便、有效，而且重復性好。
 
缺點是交聯時分子間的比例不嚴格，大小也不一，影響效果。
 
制備HRP抗體結合物也可用二步法，即先將HRP與戊二醛作用，透析除去戊二醛，在pH9.5緩沖液中再與抗體作用而形成酶標抗體。
 
此法的效率可高于一步法10倍左右。
 
2．過碘酸鹽氧化法本法只用于HRP的交聯。
 
該酶含18％碳水化合物，過碘酸鹽將其分子表面的多糖氧化為醛基。
 
用硼氫化鈉（NaBH4）中和多余的過碘酸。
 
酶上的醛根很活潑，可與蛋白質結合，形成按摩爾比例結合的酶標結合物。
 
有人認為此法為辣根過氧化物酶交聯最有效的方法。
 
但也有只認為由于所用試劑較為劇烈，各批實驗結果不易重復。
 
按以上方法
 
制備的結合物一般混有未結合的酶和抗體。
 
理論上結合物中混有游離酶不影響ELISA中最后的酶活性測定，因經過洗滌，非特異性吸附于固相上的游離酶已被洗去。
 
但游離的抗體則會與酶標抗體競爭相應的固相抗原，因而減低結合到固相上的酶標抗體量。
 
因此制備的結合物應予以純化。
 
純化的方法
 
較多，分離大分子混合物的方法
 
均可應用。
 
硫酸銨鹽析法操作簡便，但效果不如用SephadexG-200凝膠過濾的好。
 
最適工作濃度的選擇在建立某一ELISA測定中，應對包被抗原或抗體的濃度和酶標抗原或抗體的濃度予以選擇，以達到最合適的測定條件和節省測定費用。
 
下面以間接法測抗體和夾心法測抗原為例，介紹最適工作濃度的選擇方法。
 
（一）間接法測抗體1．酶標抗抗體工作濃度的選擇（1）用100ng/ml人IgG進行包被，洗滌。
 
（2）將酶標抗人IgG用稀釋液作一系列稀釋后分別加入已包被的孔中，保溫、洗滌。
 
（3）加底物顯色。
 
加酸終止反應后，讀取吸亮度（A），繪制曲線如圖15-10。
 
讀取A值在1.0時的酶標抗體稀釋度，作為酶標抗體的工作濃度。
 
該酶標抗人IgG的工作濃度應為1/1600。
 
2．棋盤滴定法選擇包被抗原工作濃度（1）用包被液將抗原作一系列稀釋后進行包被，洗滌。
 
（2）將強陽性參考血清、弱陽性參考血清和陰性參考血清用稀釋液作1:100稀釋，加樣，保溫，洗滌。
 
（3）加按工作濃度稀釋的酶標抗人IgG抗體，保溫，洗滌。
 
（4）加底物顯色。
 
加酸終止反應后讀取A值。
 
（5）選擇強陽性參考血清的A值為0.8左右、陰性參考血清的A值小于0.1的包被抗的的稀釋度作為工作濃度。
 
表15-1為本例的測定結果，表中數字為A值。
 
從表中可見1:200為最舒適的工作濃度。
 
表15-1間接ELISA法包被抗原工作濃度的選擇各類血清抗原稀釋度1:501:1001:2001:4001:800強陽性1.201.040.840.680.42弱陽性0.640.410.300.220.19陰性0.230.130.080.660.05稀釋液0.090.020.020.020.04（二）夾心法測抗原在夾心法ELISA法中可用棋盤滴定法同時選擇包被抗體和酶標抗體的工作濃度，舉例如下（表15-2）：表15-2夾心ELISA包被抗體和酶標抗體工作濃度的選擇包被抗體的濃度及酶標抗體稀釋度參考抗原強陽性（25ng/ml）弱陽性（1.5ng/ml）陰性10μg/ml1:10001.170.150.091:50000.460.0301:250000.12001μg/ml1:1000＞20.250.101:50000.910.120.011:250000.250.0100.1μg/ml1:10000.420.130.131:50000.110.030.021:250000.0300（1）抗體免疫球蛋白用包被緩沖液稀釋至蛋白濃度為10、1和0.1μg/ml，分別在ELISA板上進行包被，每一濃度包括三個縱行，洗滌。
 
（2）在一個橫行各包被孔中加入強陽性抗原液，另一橫行加入弱陽性抗原液，第三橫行加入陰性對照液，保溫，洗滌。
 
（3）將酶標抗體用稀釋液稀釋成三個濃度，例如1:1000、1:5000和1:25000。
 
分別加入每一包被濃度的一個縱行中，保溫，洗滌。
 
（4）加底物顯色。
 
加酸終止反應后，讀取A值。
 
（5）以強陽性抗原的A值在0.8左右、陰性參考的A值小于0.1的條件作最適條件，據此選擇包被抗體和酶標抗體的工作濃度。
 
從表15-2可看出包被抗體濃度可選用1μg/ml，酶標抗體的稀釋度可選為1:5000。
 
為了進一步節省試劑，可以此濃度為基點，縮小間距再做進一步的棋盤滴定。
 
測定方法
 
的標準化要使ELISA測定得到準確的結果，不論是定性的還是定量的，必須嚴格按照規定的方法
 
制備試劑和實施測定。
 
主要試劑的制備要點已如前述，其他一般性試劑，如包被緩沖液、洗滌液、標本稀釋液、結合物稀釋液、底物工作液和酶反應終止液等，配制時不可掉以輕心。
 
緩沖液可于冰箱中短期保存，使用前應觀察是否變質。
 
蒸餾水的質量在ELISA中也至關重要，最好使用新鮮重蒸餾的。
 
不合格的蒸餾水可使空白值升高。
 
測定的實施中，應力求各個步驟操作的標準化，下面以板式ELISA為例，介紹有關注意事項。
 
（一）加樣在ELISA中除了包被外，一般需進行45加樣。
 
在定性測定中有時不強調加樣量的準確性，例如規定為加樣一滴。
 
此時應該使用相同口徑的滴管，保持準確的加樣姿勢，使每滴液體的體積基本相同。
 
在定量測定中則加樣量應力求準確。
 
標本和結合物的稀釋液應按規定配制。
 
加樣時應將液體加在孔底，避免加在孔壁上部，并注意不可出現氣泡。
 
（二）保溫在ELISA中一般有二次抗原抗體反應，即加標本后和加結合物后，此時反應的溫度和時間應按規定的要求，保溫容器最好是水浴箱，可使溫度迅速平衡。
 
各ELISA板不應疊在一起。
 
為避免蒸發，板上應加蓋，或將板平放在底部墊有濕紗布的濕盒中。
 
濕盒應該是金屬的，傳熱容易。
 
如用保溫箱，空濕盒應預先放在其中，以平衡溫度，這在室溫較低時更為重要。
 
加入底物后，反應的時間和溫度通常不做嚴格要求。
 
如室溫高于20℃，ELISA板可避光放在實驗臺上，以便不時觀察，待對照管顯色適當時，即可終止酶反應。
 
（三）洗滌洗滌在ELISA過程中不是反應聚，但卻是決定實驗成敗的關鍵。
 
洗滌的目的是洗去反應液中沒有與固相抗原或抗體結合的物質以及在反應過程中非特異性吸附于固相載體的干擾物質。
 
聚苯乙烯待塑料對蛋白質的吸附作用是普遍性的。
 
因此在ELISA測定的反應過程中應盡量避免非特異性吸附，而在洗滌時又應把這種非特異性吸附的干擾物質洗滌下來。
 
在標本和結合物的稀釋液和洗滌液中加入聚山梨酯（吐溫，Tween）一類物質即右達到此目的。
 
聚山梨酯是聚氧乙烯去水山梨醇脂肪酸酯，為非離子型的表面張力物質，常作為助溶劑。
 
根據脂肪酸的種類而對聚山梨酯編號，結合月桂酸的為聚山梨酯20，在ELISA中最為常用。
 
它的洗滌效果好，并具有減少非特異性吸附和增強抗原抗體結合的作用。
 
洗滌如不徹底，特別在最后一次，如有酶結合物的非特異性吸附，將使空白值升高。
 
另外，在間接法中如血清標本內的非特異性IgG吸附在固相上而未被洗凈，也將與酶標抗體作用而產生干擾。
 
ELISA板的洗滌一般可采用以下方法：①吸干孔內反應液；
 
②將洗滌液注滿板孔；
 
③放置2min，略作搖動；
 
④吸干孔內液，也可傾去液體后在吸水紙上拍干。
 
洗滌的次數一般為3～4次，有時甚至需洗5～6次。
 
（四）比色如陰性對照顏色極淺，在定性測定中一般可采用目視比色。
 
如用比色計測定結果，準確性決定于ELISA板底的平整與透明度和比色計的質量。
 

 
引用：<A href="http://big5.wiki8.com/ELISA_122656/" target=_blank>http://big5.wiki8.com/ELISA_122656/</A>

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